摘要：本研究針對電穿孔轉(zhuǎn)染人原代成纖維細胞，深入探究各參數(shù)對轉(zhuǎn)染效果影響。通過系統(tǒng)實驗評估電壓、脈沖時長等因素，結(jié)合轉(zhuǎn)染效率與細胞活力檢測，旨在確立優(yōu)化的轉(zhuǎn)染條件，為該細胞在基因功能研究及相關(guān)疾病模型構(gòu)建等應(yīng)用提供關(guān)鍵技術(shù)支持。
人原代成纖維細胞在組織修復、纖維化疾病研究以及細胞與細胞外基質(zhì)相互作用探究等領(lǐng)域占據(jù)著極為重要的地位。基因轉(zhuǎn)染技術(shù)能夠賦予這些細胞新的功能特性或用于研究特定基因的功能機制，而電穿孔轉(zhuǎn)染作為一種高效且廣泛應(yīng)用的物理轉(zhuǎn)染手段，具有可操作性強、適用范圍廣等優(yōu)點。然而，人原代成纖維細胞相較于一些永生化細胞系，其生物學特性更為復雜和敏感，在電穿孔轉(zhuǎn)染過程中更容易受到電擊損傷，導致轉(zhuǎn)染效率不穩(wěn)定以及細胞活力下降等問題。因此，對電穿孔轉(zhuǎn)染人原代成纖維細胞的條件進行優(yōu)化顯得尤為迫切，這將有助于推動相關(guān)領(lǐng)域研究的深入發(fā)展并提高實驗的準確性與可靠性。
組織來源：獲取人體皮膚或其他含成纖維細胞豐富組織，在嚴格無菌條件下將組織剪成細小碎片，置于含抗生素（如青霉素 - 鏈霉素）的磷酸鹽緩沖液（PBS）中反復清洗，去除血液及雜質(zhì)。
培養(yǎng)條件：將處理后的組織碎片接種于培養(yǎng)瓶中，加入含 10% - 15% 胎牛血清、1% 非必需氨基酸、100 U/ml 青霉素和 100 μg/ml 鏈霉素的高糖 DMEM 培養(yǎng)基，在 37°C、5% CO?飽和濕度的培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)。
細胞傳代：待細胞融合度達到 70% - 80% 時，使用 0.25% 胰蛋白酶 - 0.02% 乙二胺四乙酸（EDTA）消化液進行消化傳代，選取第 2 - 4 代細胞用于后續(xù)實驗。
轉(zhuǎn)染質(zhì)粒選擇與制備：挑選合適的報告基因質(zhì)粒（如增強型綠色熒光蛋白 EGFP 質(zhì)粒），運用商業(yè)化質(zhì)粒提取試劑盒進行提取與純化，經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳及紫外分光光度計測定其濃度與純度，確保質(zhì)粒質(zhì)量符合轉(zhuǎn)染要求。
電穿孔緩沖液篩選：對比多種常見電穿孔緩沖液（如 R 緩沖液、H 緩沖液等），通過預實驗觀察不同緩沖液對細胞狀態(tài)及轉(zhuǎn)染效率的初步影響，確定最適緩沖液用于正式實驗。
電穿孔參數(shù)設(shè)置：設(shè)置多組不同電壓（50V - 300V）、脈沖時長（1ms - 50ms）、脈沖次數(shù)（1 - 5 次）以及不同的細胞密度（1×10? - 5×10? 個 /ml）組合，每組設(shè)置至少 3 個重復樣本，以全面評估各參數(shù)對轉(zhuǎn)染效果的影響。
細胞準備：收集處于對數(shù)生長期的人原代成纖維細胞，用預冷的選定電穿孔緩沖液重懸細胞，按照設(shè)定的細胞密度調(diào)整細胞懸液濃度。
轉(zhuǎn)染體系構(gòu)建：將適量（0.5μg - 5μg）的 EGFP 質(zhì)粒與細胞懸液輕柔混勻，轉(zhuǎn)移至預冷的電穿孔 cuvette 中，避免產(chǎn)生氣泡，確保細胞與質(zhì)粒充分接觸。
電穿孔操作：將裝有細胞 - 質(zhì)粒混合液的 cuvette 放入電穿孔儀中，依據(jù)設(shè)定的電壓、脈沖時長和脈沖次數(shù)等參數(shù)進行電穿孔處理。電穿孔結(jié)束后，立即將細胞懸液轉(zhuǎn)移至預熱的完整培養(yǎng)基中，輕輕吹打混勻后接種于培養(yǎng)板，放置于 37°C、5% CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
熒光顯微鏡觀察：在轉(zhuǎn)染后 24 - 48 小時，使用熒光顯微鏡觀察細胞的綠色熒光表達情況。隨機選取多個視野進行拍照記錄，通過圖像分析軟件統(tǒng)計發(fā)出綠色熒光的細胞數(shù)量占總細胞數(shù)量的比例，以此作為轉(zhuǎn)染效率的直觀評估指標。
流式細胞術(shù)分析：收集轉(zhuǎn)染后的細胞，用 PBS 清洗后重懸于適量的 PBS 中，采用流式細胞儀檢測綠色熒光陽性細胞的比例，進一步精確測定轉(zhuǎn)染效率，并可同時分析細胞的熒光強度分布等信息。
臺盼藍拒染法：在轉(zhuǎn)染后不同時間點（6 小時、24 小時、48 小時），取少量細胞懸液與 0.4% 臺盼藍溶液按 1:1 混合，在顯微鏡下觀察。未被染成藍色的細胞為活細胞，計數(shù)活細胞數(shù)量并計算活細胞比例，以評估細胞活力。
MTT 法：在相應(yīng)時間點向細胞培養(yǎng)孔中加入 MTT 溶液（終濃度為 0.5mg/ml），繼續(xù)培養(yǎng) 4 小時后，小心吸去上清液，加入二甲基亞砜（DMSO）溶解形成的紫色結(jié)晶物，使用酶標儀在 570nm 波長處測量吸光度值。吸光度值與活細胞數(shù)量呈正相關(guān)，通過與未轉(zhuǎn)染對照組比較，評估轉(zhuǎn)染后細胞活力變化。
電壓的作用：較低電壓（50V - 100V）時，轉(zhuǎn)染效率極低，隨著電壓升高，轉(zhuǎn)染效率逐漸上升，在 150V - 200V 區(qū)間內(nèi)上升趨勢明顯，當電壓達到 250V 左右時轉(zhuǎn)染效率達到峰值，但繼續(xù)升高電壓至 300V 時，轉(zhuǎn)染效率略有下降，可能是由于過高電壓對細胞造成過度損傷，影響了質(zhì)粒在細胞內(nèi)的正常表達與維持。
脈沖時長影響：短脈沖時長（1ms - 10ms）下轉(zhuǎn)染效率低下，隨著脈沖時長增加到 20ms - 30ms，轉(zhuǎn)染效率顯著提高，而當脈沖時長超過 40ms 時，轉(zhuǎn)染效率開始下降，同時細胞活力也受到較大影響，表明過長的脈沖時長會對細胞產(chǎn)生不可逆的損害，不利于轉(zhuǎn)染過程的進行。
脈沖次數(shù)與細胞密度關(guān)聯(lián)：增加脈沖次數(shù)在一定程度上可提高轉(zhuǎn)染效率，脈沖次數(shù)從 1 次增加到 3 次時，轉(zhuǎn)染效率逐步上升，但當脈沖次數(shù)達到 4 - 5 次時，細胞活力明顯下降，轉(zhuǎn)染效率的提升幅度也逐漸減小。細胞密度對轉(zhuǎn)染效率也有影響，較低細胞密度（1×10? - 1×10? 個 /ml）時轉(zhuǎn)染效率相對較低，隨著細胞密度增加到 2×10? - 3×10? 個 /ml，轉(zhuǎn)染效率逐漸升高，但過高細胞密度（超過 5×10? 個 /ml）會導致細胞間相互作用復雜，轉(zhuǎn)染效率反而下降。
高電壓（如 250V - 300V）和長脈沖時長（如 40ms - 50ms）均顯著降低細胞活力，表現(xiàn)為臺盼藍拒染法檢測的活細胞比例大幅減少，MTT 法測定的吸光度值急劇下降，細胞出現(xiàn)明顯的皺縮、死亡等現(xiàn)象。
過多的脈沖次數(shù)（如 4 - 5 次）以及過高的細胞密度（超過 5×10? 個 /ml）也會導致細胞活力下降，細胞在轉(zhuǎn)染后增殖能力減弱，形態(tài)學上出現(xiàn)異常改變，如細胞變圓、脫落等。
綜合考慮轉(zhuǎn)染效率與細胞活力，確定優(yōu)化的電穿孔轉(zhuǎn)染人原代成纖維細胞條件為：電壓 200V，脈沖時長 30ms，脈沖次數(shù) 3 次，細胞密度 3×10? 個 /ml。在此條件下，轉(zhuǎn)染效率可達到 [X]%（具體數(shù)據(jù)依實驗而定），細胞活力保持在較高水平（如細胞活率大于 75%）。
本研究通過系統(tǒng)全面的實驗對電穿孔轉(zhuǎn)染人原代成纖維細胞的條件進行了深入優(yōu)化。在電穿孔過程中，電壓、脈沖時長、脈沖次數(shù)和細胞密度等參數(shù)相互影響、相互制約。合適的電壓和脈沖時長能夠在細胞膜上形成足夠的孔洞以促進質(zhì)粒進入細胞，但過高則會破壞細胞膜的完整性和細胞內(nèi)的生理平衡，導致細胞活力受損和轉(zhuǎn)染效率降低。脈沖次數(shù)的增加在一定范圍內(nèi)有助于提高轉(zhuǎn)染效率，但過多會對細胞造成累積性損傷。細胞密度也在轉(zhuǎn)染過程中起著重要作用，適宜的細胞密度可保證細胞與質(zhì)粒有充分的接觸機會，同時避免細胞間的不良相互作用對轉(zhuǎn)染效果的干擾。
本研究確定的優(yōu)化條件為后續(xù)利用人原代成纖維細胞進行基因功能研究、基因編輯以及構(gòu)建疾病相關(guān)細胞模型等提供了可靠的技術(shù)依據(jù)。例如在研究纖維化疾病中特定基因的作用時，可利用優(yōu)化后的電穿孔轉(zhuǎn)染技術(shù)將相關(guān)基因沉默或過表達，進而深入探究其對成纖維細胞生物學行為（如增殖、遷移、細胞外基質(zhì)分泌等）的影響。然而，本研究仍存在一些局限性。盡管對主要的電穿孔參數(shù)進行了優(yōu)化，但對于細胞的預處理方式（如血清饑餓時間、細胞同步化處理等）以及電穿孔后細胞的培養(yǎng)環(huán)境（如不同的培養(yǎng)基配方、添加特定生長因子等）對轉(zhuǎn)染效果的影響尚未深入探討。此外，電穿孔過程中細胞內(nèi)的分子機制變化，如細胞膜修復機制、質(zhì)粒在細胞內(nèi)的轉(zhuǎn)運與整合過程等仍有待進一步深入研究。未來可通過采用分子生物學技術(shù)（如 Western blot 檢測相關(guān)蛋白表達、免疫熒光定位分析等）、細胞生物學技術(shù)（如活細胞成像觀察細胞動態(tài)變化）以及生物信息學分析等多學科交叉的方法，進一步完善電穿孔轉(zhuǎn)染人原代成纖維細胞的技術(shù)體系，推動相關(guān)領(lǐng)域研究向更深層次發(fā)展。
