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端粒酶基因轉染豬氣管上皮細胞增殖探究

更新時間:2025-01-23      點擊次數:714

摘要

本研究旨在探討外源性端粒酶基因(hTERT)轉染對豬氣管上皮細胞(STECs)增殖特性的影響。通過脂質體法將重組質粒pCI-neo-hTERT導入STECs,轉染后的細胞表現出增高的增殖活性,并保持基本的細胞生物學特征,為建立穩定傳代的細胞系提供了可能。

引言

哺乳動物的氣管黏膜上皮細胞(Trachea epithelium cells, TECs)不僅是多種病原體的靶細胞,也是阻擋病原入侵的重要屏障。豬氣管上皮細胞(Swine trachea epithelium cells, STECs)作為研究豬呼吸道疾病發病機制的重要模型,其體外培養技術的建立具有重要意義。然而,原代培養的STECs存在壽命短暫的局限性,限制了其廣泛應用。端粒酶是一種能夠維持端粒長度的核糖核蛋白復合物,通過激活端粒酶,可以延長細胞在體外培養的壽命,從而實現細胞的永生化。本研究通過轉染外源性端粒酶基因(hTERT)至STECs,探討其對細胞增殖特性的影響,旨在為建立永生化的豬氣管上皮細胞系奠定基礎。

材料與方法

材料
方法
  1. STECs的分離與培養:無菌采取初生仔豬氣管,采用鏈酶蛋白酶灌注冷消化法分離得到原代STECs。分離后的細胞在37℃、5% CO2條件下培養,并觀察細胞形態。

  2. 細胞鑒定:采用間接免疫熒光法鑒定8型角蛋白的上皮源性,確認分離得到的細胞為豬氣管上皮細胞。

  3. 基因轉染:以脂質體法將重組質粒pCI-neo-hTERT導入STECs。脂質體與質粒的體積比為1:3,轉染48小時后加G418進行抗性篩選1個月,得到抗G418的陽性克隆,繼續擴大培養。

  4. 基因表達檢測:采用PCR和Western blot法檢測轉染后STECs中hTERT基因的表達情況。

  5. 細胞增殖活性檢測:用MTT法和流式細胞儀分別檢測轉染細胞的活力和增殖周期。

實驗結果

轉染效率與基因表達

通過倒置顯微鏡觀察,轉染后的STECs形態正常,細胞呈單層貼壁,多邊形鋪路石狀生長。PCR擴增得到大小為461 bp的hTERT基因片段,Western blot檢測得到大小為125 ku的特異性條帶,表明hTERT基因在轉染細胞中成功表達。

細胞增殖特性

細胞活力曲線顯示,轉染后的STECs在接種后的第3~5天增殖速度最快。流式細胞儀檢測結果顯示,轉染細胞的細胞核型為2倍體,S期細胞比例達到48.35%,說明轉染后的細胞具有較高的增殖活性。

永生化細胞系的建立

經過長期培養,轉染hTERT基因的STECs成功建立了永生化的細胞系,可傳代至55代以上,且保持了原代細胞的形態及功能特性。永生化細胞系具有正常的細胞增殖周期,比原代細胞生長更為活躍。

討論

端粒酶與細胞永生化

端粒是影響細胞永生化機制的重要因素之一。端粒長度決定了細胞的增殖能力和壽命,足夠長的端粒長度能在染色體末端形成環狀結構,提供保護。當端粒縮短到一定程度時,細胞將逐漸失去增殖能力,導致衰老和死亡。通過激活端粒酶,可以延長染色體末端DNA,確保端粒足夠的長度,從而延長細胞在體外培養的壽命。本研究通過轉染hTERT基因,成功激活了STECs的端粒酶活性,實現了細胞的永生化。

永生化細胞系的應用前景

永生化細胞系具有長期培養、增殖活性高、遺傳性狀穩定等優點,是研究疾病發病機制、藥物篩選和疫苗開發的重要工具。本研究建立的永生化的STECs不僅保持了原代細胞的形態及功能特性,還具有更高的端粒酶活性和增殖活性。該細胞系可用于豬呼吸道病原體的感染研究,為揭示豬呼吸道疾病的發病機制提供新的細胞模型。

實驗策略與創新點

本研究采用脂質體法將重組質粒pCI-neo-hTERT導入STECs,通過優化轉染條件,提高了轉染效率。同時,通過嚴格的抗性篩選和純化步驟,成功建立了永生化的細胞系。該細胞系的建立不僅為豬呼吸道疾病的研究提供了新的細胞模型,也為其他動物細胞永生化的研究提供了借鑒。

研究的創新與應用

創新點
  1. 方法創新:本研究采用脂質體法將hTERT基因轉染至STECs,成功實現了細胞的永生化,為豬呼吸道上皮細胞的長期培養提供了新方法。

  2. 模型創新:建立的永生化的STECs保持了原代細胞的形態及功能特性,具有更高的增殖活性,為豬呼吸道病原體的感染研究提供了新的細胞模型。

應用前景
  1. 疾病研究:永生化的STECs可用于豬呼吸道病原體的感染研究,揭示病原體的致病機制和宿主的防御機制。

  2. 藥物篩選:該細胞系可用于藥物篩選,評估藥物對豬呼吸道病原體的抑制作用和細胞毒性。

  3. 疫苗開發:永生化的STECs可作為疫苗開發的細胞基質,用于生產高效、安全的疫苗。


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