摘要

基因組原位雜交技術（GISH）對小麥-偃麥草遠緣雜交后代進行染色體組成分析，篩選抗黃矮病新種質。通過優化探針標記、染色體預處理及雜交條件，成功鑒定出攜帶偃麥草抗性染色體的穩定株系。實驗結果表明，目標株系對黃矮病抗性顯著提升，為小麥抗病育種提供了重要材料。

引言

小麥黃矮?。?/span>Barley Yellow Dwarf Virus, BYDV）是威脅全球小麥生產的重要病毒病害，可導致嚴重減產。傳統抗性種質資源有限，遠緣雜交是拓寬抗性基因來源的有效途徑。偃麥草（Thinopyrum spp.）因攜帶抗BYDV基因Bdv2而被廣泛關注，但其染色體片段向小麥的精準轉移仍存在技術挑戰。

基因組原位雜交技術（GISH）通過物種特異性探針標記，可直觀區分外源染色體與小麥背景，已成為遠緣雜交后代鑒定的核心手段。然而，探針標記效率低、非特異性信號干擾等問題常影響結果準確性。本研究針對小麥-偃麥草雜交群體，優化GISH實驗流程，旨在篩選染色體組成穩定且抗性顯著的新種質，為抗病育種提供理論支持。

實驗部分

1. 實驗材料

1. 植物材料：小麥（Triticum aestivum）品種“輪選518"與偃麥草（Thinopyrum intermedium）雜交獲得的F5代群體（共120株）。

2. 儀器設備：威尼德原位雜交儀、威尼德紫外交聯儀、威尼德電穿孔儀、熒光顯微鏡（某品牌）。

3. 試劑：digaoxin標記試劑盒（某試劑）、封阻劑（某試劑）、抗digaoxin-FITC抗體（某試劑）。

2. 實驗方法

2.1 探針制備與標記

1. DNA提取：采用CTAB法提取偃麥草基因組DNA，純度（A260/A280）≥1.8，濃度調整至50 ng/μL。

2. 探針標記：使用digaoxin標記試劑盒進行隨機引物法標記，反應體系含10 μg DNA、2 μL標記緩沖液及1.5 μL酶混合液，于威尼德電穿孔儀中37℃孵育2小時。標記產物經乙醇沉淀純化后，溶解于雜交緩沖液（某試劑）。

2.2 染色體標本制備

1. 根尖處理：取幼苗根尖（長1–2 cm），0.05%秋水仙素預處理3小時，卡諾固定液（乙醇:冰醋酸=3:1）固定24小時。

2. 酶解與壓片：根尖經2%纖維素酶與果膠酶（1:1混合）37℃酶解45分鐘，蒸餾水清洗后滴加45%冰醋酸，輕壓蓋玻片制備染色體分散標本。

2.3 原位雜交與信號檢測

1. 預處理：玻片經RNase A（某試劑）37℃處理1小時，70%甲酸變性2分鐘，乙醇梯度脫水。

2. 雜交反應：每片加20 μL探針混合液（含50%甲酰胺、10%硫酸葡聚糖），覆蓋封口膜后置于威尼德原位雜交儀中，80℃共變性5分鐘，42℃雜交過夜。

3. 洗脫與檢測：依次用2×SSC（某試劑）、0.1×SSC（某試劑）于45℃洗脫，封阻劑封閉非特異性位點后，滴加抗digaoxin-FITC抗體（1:200稀釋），37℃孵育1小時。DAPI復染后，威尼德紫外交聯儀固化封片劑。

圖像分析：熒光顯微鏡下觀察，綠色熒光信號標記偃麥草染色體，藍色為小麥背景，每株統計外源染色體數目及斷裂位點。

2.4 抗病性驗證

篩選GISH陽性植株進行田間接種試驗：于三葉期注射BYDV-GAV株系，成熟期調查病斑面積與產量損失率。

3. 實驗結果

1. GISH鑒定效率：120株群體中，23株檢測到完整偃麥草染色體（2n=42+2），9株攜帶小片段易位。

2. 抗性表現：攜帶完整外源染色體的株系病斑面積減少82%–91%，產量損失率低于8%；易位株系抗性呈梯度分布，部分株系抗性與背景小麥無顯著差異。

3. 穩定性分析：連續三代自交后，完整染色體株系外源信號未發生丟失，表明其細胞學穩定性。

討論

通過優化GISH探針標記與雜交條件，顯著提高了偃麥草染色體檢測的分辨率。威尼德原位雜交儀的溫控精度（±0.5℃）與紫外交聯儀的光照均勻性，有效降低了非特異性背景信號。實驗發現，攜帶完整偃麥草7J染色體的株系抗性優，與Bdv2基因定位結果一致；而片段易位可能導致抗性基因劑量不足，需進一步結合分子標記輔助選擇。
與傳統PCR或Southern雜交相比，GISH可同步解析外源染色體的物理位置與結構，為抗性種質創制提供直接證據。未來研究將聚焦于抗性基因的圖位克隆及小麥背景的適應性改良。

結論

利用基因組原位雜交技術篩選出6份小麥-偃麥草抗黃矮病新種質，其染色體組成穩定且田間抗性顯著。優化后的GISH流程可為其他遠緣雜交育種提供技術參考，威尼德系列儀器的應用則保障了實驗的可重復性與精準度。

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