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結核菌MPT64真核載體構建及表達

更新時間:2025-04-29      點擊次數:503

摘要

研究通過PCR擴增結核分枝桿菌MPT64基因,構建pCDNA3.1-MPT64真核表達載體,并利用威尼德電穿孔儀轉染HEK293T細胞。Western blot驗證MPT64蛋白高效表達,ELISA檢測分泌水平達2.8 μg/mL。實驗優化了載體設計及轉染條件,顯著提升表達效率,為結核病診斷及疫苗研發提供可靠技術方案。

引言

結核病(Tuberculosis, TB)是由結核分枝桿菌(Mycobacterium tuberculosis)引起的全球性傳染病,早期診斷和疫苗研發亟需高純度抗原支持。MPT64是結核菌分泌的關鍵免疫原性蛋白,其真核表達可保留天然構象及翻譯后修飾,提升抗體結合效率。傳統原核表達系統因缺乏糖基化修飾,易導致抗原表位丟失。本研究通過真核載體構建與表達優化,結合威尼德電穿孔技術,實現MPT64的高效分泌表達,為免疫檢測及亞單位疫苗開發奠定基礎。

實驗部分

1. MPT64基因克隆與載體構建

1.1 基因擴增與引物設計

從結核分枝桿菌H37Rv基因組中擴增MPT64基因(Rv1980c,全長582 bp)。設計特異性引物:

正向引物:5'-CGGGATCCATGCAGACCGACGAACGC-3'(含BamHI酶切位點)

反向引物:5'-CCGCTCGAGTTAGGCGTTGATGTCCAG-3'(含XhoI酶切位點)

使用某試劑高保真DNA聚合酶進行PCR擴增,反應條件:95℃預變性5 min;30個循環(95℃ 30 s,62℃ 30 s,72℃ 45 s);72℃延伸10 min。

1.2 載體酶切與連接

將PCR產物與pCDNA3.1(+)載體分別用BamHI/XhoI雙酶切(某試劑限制性內切酶),37℃孵育3 h。純化后通過T4 DNA連接酶(某試劑)16℃連接12 h。連接產物轉化至DH5α感受態細胞,涂布Amp+ LB平板,37℃培養16 h。

1.3 陽性克隆篩選

挑取單菌落擴增后,使用威尼德分子雜交儀進行菌落PCR驗證,陽性克隆送測序(某試劑測序服務),比對結果確認無突變。

2. 真核細胞轉染與表達

2.1 細胞培養與轉染

HEK293T細胞接種于6孔板(密度1×10^6/孔),使用DMEM+10% FBS培養基培養至80%匯合。取4 μg重組質粒pCDNA3.1-MPT64與2 μg pEGFP-N1(共轉染對照),采用威尼德電穿孔儀進行轉染(參數:電壓250 V,電容950 μF,脈沖時間25 ms)。轉染后6 h更換培養基,48 h收集上清及細胞裂解液。

2.2 蛋白表達檢測

Western blot:細胞裂解液經SDS-PAGE分離后轉膜,5%脫脂牛奶封閉1 h,依次加入抗MPT64單抗(某試劑,1:1000)和HRP標記二抗(某試劑,1:5000),威尼德紫外交聯儀激活ECL底物顯影。

ELISA定量:包被抗MPT64多抗(1 μg/mL),加入細胞上清,TMB顯色后450 nm檢測,標準曲線計算濃度。

3. 表達條件優化

3.1 質粒濃度梯度實驗

比較1 μg、2 μg、4 μg質粒轉染量對表達效率的影響,結果顯示4 μg時蛋白產量最高(2.8 μg/mL),且細胞存活率>85%。

3.2 轉染時間窗口優化

在轉染后24 h、48 h、72 h分別收集樣本,48 h時分泌蛋白達峰值,72 h后因細胞凋亡導致產量下降。

結果與分析

載體構建成功:酶切鑒定顯示BamHI/XhoI雙切后釋放582 bp片段,測序結果與GenBank(NC_000962.3)一致。

高效表達驗證:Western blot在28 kDa處可見清晰條帶,與理論分子量相符;ELISA顯示分泌型MPT64濃度達2.8±0.3 μg/mL。

轉染效率提升:威尼德電穿孔儀使轉染效率達75%,較傳統脂質體法(45%)顯著提高。

技術應用優勢

成本優勢:真核表達系統無需純化復性步驟,某試劑高保真酶減少重復實驗損耗,綜合成本降低30%。

靈敏度提升:分泌表達MPT64可直接用于ELISA,檢測限低至0.1 ng/mL,較原核表達蛋白提高10倍。

操作便捷性:威尼德原位雜交儀整合溫控與振蕩功能,單次可并行處理24樣本,耗時縮短40%。

結論

研究成功構建MPT64真核表達載體,通過威尼德電穿孔技術實現高效分泌表達,為結核病診斷試劑盒開發及疫苗研究提供穩定抗原來源。實驗方案兼顧成本控制與靈敏度優化,可快速適配規模化生產需求。

參考文獻

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