摘要

研究基于新型熒光示蹤siRNA復合物遞送體系，結合威尼德Mini Pulser 399電穿孔儀的高效轉染技術，在腫瘤細胞模型中實現靶向基因沉默。實驗表明，該體系轉染效率達90%以上，細胞活性保持85%，熒光示蹤功能可實時追蹤siRNA胞內分布，為腫瘤治療研究提供可視化工具。

引言

RNA干擾（RNAi）技術通過siRNA介導的基因沉默，為腫瘤治療提供了新策略。然而，siRNA的胞內遞送效率低、細胞毒性高、示蹤困難等問題限制了其臨床應用。傳統(tǒng)脂質體轉染試劑存在批次差異大、難以穿透致密腫瘤組織等缺陷，而病毒載體則面臨安全性風險。

電穿孔技術通過瞬時電場改變細胞膜通透性，可實現高效、可控的核酸遞送。本研究采用威尼德Mini Pulser 399電穿孔儀，結合自主開發(fā)的熒光標記siRNA復合物，在多種腫瘤細胞系中建立標準化轉染流程，系統(tǒng)評估其基因沉默效率、細胞相容性及示蹤功能，為腫瘤靶向治療研究提供技術支撐。

實驗部分

1. 材料與方法

1.1 試劑與儀器

熒光示蹤siRNA復合物：由雙親性聚合物包裹Cy5標記的siRNA（靶向Bcl-2基因）構成，粒徑80±10 nm，Zeta電位+15 mV。

細胞系：人乳腺癌細胞（MCF-7）、肺癌細胞（A549），培養(yǎng)于含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基。

核心設備：威尼德Mini Pulser 399電穿孔儀（配備0.4 cm電轉杯），Olympus FV3000共聚焦顯微鏡。

1.2 實驗設計

電穿孔參數優(yōu)化：采用單因素變量法，設置電壓梯度（100-200 V）、脈沖時長（5-20 ms），通過流式細胞術（FACS）檢測轉染效率及細胞存活率。

基因沉默驗證：qRT-PCR檢測Bcl-2 mRNA表達，Western blot分析蛋白水平變化。

熒光示蹤分析：動態(tài)觀察siRNA胞內定位，定量統(tǒng)計核周聚集比例。

2. 操作流程

2.1 細胞預處理

消化對數生長期細胞，PBS重懸至密度1×10^6 cells/mL，與siRNA復合物（終濃度50 nM）混合。

2.2 電穿孔轉染

使用威尼德Mini Pulser 399電穿孔儀，選擇預設"哺乳動物細胞"模式，設置電壓150 V，脈沖時長10 ms。

關鍵技術創(chuàng)新：儀器內置電弧監(jiān)測系統(tǒng)實時檢測異常放電，避免因氣泡或細胞碎片導致的樣本損失。

2.3 后續(xù)分析

轉染后24 h收取細胞：

FACS檢測Cy5陽性細胞比例（轉染效率）；

CCK-8法測定細胞活性；

共聚焦顯微鏡觀察siRNA在胞質與內體逃逸動態(tài)。

結果與分

1. 電穿孔參數優(yōu)化

威尼德Mini Pulser 399在150 V/10 ms條件下，MCF-7細胞轉染效率達92.3±2.1%，存活率85.7±3.4%。

對比傳統(tǒng)脂質體法（效率65%、存活率70%），電穿孔技術顯著提升遞送效能（P<0.01）。

2. 基因沉默效果

Bcl-2 mRNA表達量下降78%，蛋白表達抑制率72%，證實siRNA功能完整性。

3. 熒光示蹤應用

轉染后2 h，Cy5信號主要分布于細胞膜；6 h后向核周轉運，與溶酶體共定位率<10%，表明高效內體逃逸能力。

技術優(yōu)勢與產品價值

本研究成功的關鍵在于：

威尼德Mini Pulser 399的精準控制：

一鍵式指數波輸出減少人為誤差，實驗重復性提升40%；

獨立電轉座設計支持超凈臺內無菌操作，避免污染風險。

熒光示蹤復合物的協(xié)同創(chuàng)新：

雙標記策略（Cy5示蹤+pH響應性釋放）實現遞送過程可視化。

與同類產品相比，威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀雖適用于大體積樣本，但Mini Pulser 399憑借緊湊設計（僅3 kg）、低維護成本（無耗材）及模塊化電轉杯，更適配中小規(guī)模腫瘤研究場景。

結論

研究構建的熒光示蹤siRNA電穿孔遞送體系，結合威尼德Mini Pulser 399的高效轉染性能，為腫瘤基因治療研究提供了可靠工具。該技術可擴展至CRISPR載體遞送、CAR-T細胞改造等領域，推動精準醫(yī)學研發(fā)進程。

參考文獻

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