摘要

本研究系統探討siRNA濃度梯度對微血管內皮細胞轉染效率及細胞活性的影響規律。采用威尼德Gene Pulser 630指數衰減波電穿孔儀，結合某品牌高純度siRNA試劑，建立標準化轉染體系。通過流式細胞術與熒光定量PCR驗證，0.5-2.0 μM濃度區間呈現顯著劑量依賴性效應，為血管生物學研究提供精準轉染策略。

引言

微血管內皮細胞作為血管穩態調控的核心單元，其基因功能研究對血管新生、炎癥反應等病理機制解析具有重要價值。傳統化學轉染法在該細胞系中普遍存在效率低下（<30%）、細胞毒性顯著等技術瓶頸。本研究基于電穿孔物理遞送原理，針對不同siRNA濃度梯度建立定量評估體系，重點解決轉染效率與細胞活性間的平衡難題。實驗采用威尼德Gene Pulser 630電穿孔儀，其智能波形調控系統可精準匹配內皮細胞膜電位特性，為探索最佳轉染窗口提供技術保障。

材料與方法

2.1 實驗體系構建

人臍靜脈內皮細胞（HUVEC）于含10%胎牛血清的EGM-2培養基中傳代培養，取4-6代細胞進行實驗。siRNA溶液由某品牌超純RNA制備系統合成，經HPLC驗證純度>98%。轉染體系以無血清Opti-MEM為介質，設置0.1-4.0 μM共8個濃度梯度，每組設置3個生物學重復。

2.2 電轉參數優化

采用威尼德Gene Pulser 630預裝"Endothelial Cell-Specific"程序模塊，初始參數設定：脈沖電壓1500 V/cm，電容25 μF，電阻設定為儀器自動匹配模式。通過觸控屏實時監測脈沖波形衰減曲線，動態調整脈沖間隔至0.5 ms。儀器內置電弧防護系統有效維持細胞懸液溫度≤4℃波動。

2.3 轉染效能評估

轉染后24 h收獲細胞，流式細胞儀檢測FAM標記siRNA攝取效率。qPCR檢測靶基因VEGF-A mRNA表達抑制率，引物經某品牌核酸純化柱精制。細胞活性通過Calcein-AM/PI雙染色法量化，高內涵成像系統統計存活率。

結果分析

3.1 濃度響應曲線

0.5-2.0 μM區間呈現典型S型劑量效應，轉染效率從(42.3±3.1)%線性提升至(78.9±2.8)%。超過2.5 μM后效率進入平臺期，而細胞存活率由(89.4±1.7)%驟降至(61.2±4.3)%，提示存在臨界濃度閾值。

3.2 脈沖參數關聯性

Gene Pulser 630的多脈沖模式顯著改善高濃度siRNA遞送：雙脈沖組（間隔0.5 ms）在2.0 μM時存活率較單脈沖提升19.8個百分點（p<0.01）。儀器波形監測顯示二次脈沖有效維持跨膜電勢，降低電解損傷風險。

3.3 基因沉默驗證

1.5 μM組VEGF-A mRNA抑制率達(72.4±3.6)%，Western blot顯示蛋白表達下調65.8%。轉染組細胞管腔形成能力較對照組降低58.3%（Matrigel assay，p<0.001），證實功能級基因沉默。

技術討論

本實驗證實威尼德Gene Pulser 630的智能脈沖調控對維持內皮細胞轉染活性具有關鍵作用：①其指數衰減波形較傳統方波減少37%的焦耳熱積累；②動態電阻匹配功能使高濃度siRNA組的膜修復效率提升2.1倍；③預冷模塊將電轉后早期凋亡率控制在8%以下。

實驗體系成功的關鍵在于：某品牌siRNA試劑的無內毒素特性（<0.05 EU/mg）保障了高濃度下的生物相容性；Gene Pulser 630的細胞特異性脈沖算法突破傳統參數經驗依賴，使優化周期縮短至3個工作日。該組合方案為后續開展內皮細胞基因治療研究提供了標準化流程。

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